Combo Aprimoramento Biologia Molecular – 5 cursos

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CONTEÚDO

Nesse combo de aprimoramento completo em Biologia Molecular, ministrado pelo prof. Dr. Lauro Thiago Turaça, estão reunidos todos os conceitos sobre a prática em Biologia Molecular. Com esses 5 cursos somando 300 horas de carga horária com certificado registrado você vai aprender tudo o que precisa para trabalhar de forma correta em um laboratório de Biologia molecular. Você verá desde os conceitos básicos e fundamentais aprendidos da graduação e necessários para a prática do dia a dia até todos os conceitos práticos, dentre eles: extração e análise de DNA e RNA, reação de PCR convencional, transcrição reversa, PCR em tempo real, sequenciamento de DNA, clonagem genica, análise de fragmento, desenho de primers, análise de resultados laboratoriais de pesquisa, análises clínicas, indústria e perícia criminal, eletroferogramas, problemas nas técnicas, entre outros. Diferente de outros cursos presentes no país que abordam somente os conceitos teóricos, esse aprimoramento aborda em 85% de seu conteúdo, os conceitos práticos.

Cursos Inclusos:

• Fundamentos da Biologia Molecular – R$ 147,00

• Técnicas em Biologia Molecular I – R$ 147,00

• Técnicas em Biologia Molecular II – R$ 147,00

• Técnicas em Biologia Molecular III – R$ 147,00

• Análise de DNA em softwares – R$ 250,00

Assuntos abordados

• Apostila
• Introdução aos fundamentos e dogma central da biologia molecular
• Replicação (duplicação)
• Transcrição
• Tradução
• Regiões gênicas e promotores
• Splicing Alternativo
• Procarioto x Eucarioto
• Reação em Cadeia da Polimerase (PCR)
• Engenharia genética
• Incorporação de DNA
• Aplicações
• Exões
• Introns
• Splicing Alternativo
• Promotores, Enhancers e Silenciadores
• Direções das transcrições
• Conservação
• Como utilizar a plataforma Ensembl
• Funções dos primers
• Primers e suas características
• Fundamentos da PCR
• Componentes da reação
• Fundamentos da amplificação
• Temperaturas ótimas
• Platô
• Fundamentos do PCR real time
• Exemplos de amplificação
• Controles negativos
• ​Otimização da técnica de PCR
• Fundamentos da transcrição reversa
• Aplicações
• Primers oligo dT e Random primer
• Fundamentos da técnica
• Oligos marcados
• Condutas laboratoriais
• Cuidados com a micropipeta
• Calibrações de micropipetas
• Tipos de pipetagens
• Tipos de extração de DNA
• Fontes de extração x tipo de extração
• Extração Salina na prática
• Kits comerciais
• Comparativos de equipamentos automatizados
• Tipos de equipamentos
• Dosando no Nanodrop
• Avaliando a dosagem
• Avaliando a qualidade do DNA e RNA
• Razões 260/280 e 230/280
• Concentrações de agarose x tamanho de fragmento
• Cuba de eletroforese e migração
• Intercalantes de ácidos nucleicos
• Condições para eletroforese
• Condições para migração de RNA
• Injeção de amostra
• Analisando a qualidade do DNA
• Analisando a qualidade do RNA
• Proporções nas extrações
• Coleta de entrefase
• Lavagem adequada
• Reagentes necessários
• Exemplo de protocolo
• Termociclador
• Preparando a reação e Termociclador (vídeo)
• Interpretando os de resultados
• Reação linear
• Capilar
• Formato de saída (output)
• Genética forense
• Teste de paternidade
• Expressão gênica
• Transgênicos
• Genotipagem
• Doenças genética
• Exame genético
• Fundamentos da transcrição reversa
• Fundamentos da PCR em tempo real
• Controle de qualidade
• Concentracao de primers
• Curva de eficiência
• Análise Quantitativa (Absoluta)
• Análise Relativa
• Controles
• Curva de Melting
• Cálculos
• Aplicações gerais
• Fundamentos da técnica de Sequenciamento de DNA (Sanger)
• Reação linear x exponencial
• Formato de saída (output)
• Como analisar sequenciamento Sanger
• Troubleshootings
• Artefatos
• Rearranjos
• Alterações
• Como descrever alterações moleculares
• Mutações
• Polimorfismos
• Artefatos
• Rearranjos
• Missense
• Nonsense
• Deleções
• Inserções
• Indels
• Análise de fragmento
• Fundamentos da técnica
• Aplicações
• Aplicações em: Genética forense, Teste de paternidade, Transgênicos, Genotipagem, Doenças genética, Exame genético
• Conceito de sequenciamento
• Localizando e ressaltando as principais regiões moleculares de um gene (Ensembl)
• Realizando download e organizando a estrutura de um gene (Ensembl)
• Verificando as isoformas do gene (splicing alternativo)
• Localização dos primers de PCR convencional, real time e sequenciamento
  Como desenhar primers com alta chance de sucesso para Sequenciamento e PCR convencional, Real Time
• Como desenhar primers com alta chance de sucesso para e PCR  em tempo real
• Solicitando Primers para empresas
• Alinhamento de sequências e Identificação de alterações moleculares (Polimorfismos e Mutações)
• Como predizer em softwares o impacto de uma mutação genética

PROFESSOR(A)

Dr. Lauro Thiago Turaça [ Professor ]

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Possui bacharelado em Ciências Biológicas (modalidade médica) pela Universidade Federal de São Paulo (2009). Recebeu o título de mestre em Ciências pela Universidade Federal de São Paulo em 2011. Recebeu o título de doutor em Ciências pela Universidade Federal de São Paulo em 2018 pelo programa de Biologia Molecular. Atualmente é staff research no Instituto do Coração (INCOR) e trabalha com regeneração cardíaca, infarto do miocárdio, células IPS, terapia celular, células-tronco e disease models.

INFORMAÇÕES

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